ТЕХНОЛОГИЯ ВЫДЕЛЕНИЯ И ИЗУЧЕНИЕ ХИМИЧЕСКОГО СОСТАВА МЕЛАНИНА ИЗ БАЗИДИАЛЬНОГО ГРИБА BOVISTA PLUMBEA
Аннотация
Приведены результаты разработки технологии выделения меланинов из базидиального гриба Bovista plumbea, произрастающего на территории Ташкента и Ташкентской области Республики Узбекистан. Разработана технологическая схема получения меланинов из базидиалных грибов, которая включает следующие стадии: сушка, измельчение сырья, очистка, водная экстракция, фильтрация, концентрирование, подкисление, центрифугирование, растворение, промывка, сушка. Путем водной экстракции выделены меланины, представляющие собой порошок темно-коричневого цвета, растворимый в щелочах. Содержание меланина с молекулярной массой 55686 Да в экстракте составило 15,35%, что говорит о перспективности данного вида сырья для получения лекарственных препаратов. При изучении элементного состава меланинов, полученных из плодовых тел базидиальных грибов методом водной экстракции, установлено, что они содержат 9,706% азота, 55,831% углерода и 7,203% водорода. Для подтверждения принадлежности полученных образцов к категории меланинов использовали УФ и ИК-спектроскопию. Исследованы ИК спектры меланина, выделенного из плодового тела базидиального гриба. Для меланинов характерны полосы поглощения в области 1690-1590 см-1, свидетельствующие о наличии в их структуре сопряженных ароматических связей. Также имеется широкая полоса поглощения в области 3430–3100 см-1, которая обусловлена наличием полифенольных и ОН-групп. УФ-спектральный анализ на содержание меланина во фракциях базидиомицетного сырья показал наличие в области 320-380 нм полос поглощения, соответствующих характерным полосам поглощения меланина.
Для цитирования:
Хайтметова С.Б., Халилова Г.А., Тураев А.С. Технология выделения и изучение химического состава меланина из базидиального гриба Bovista plumbea. Изв. вузов. Химия и хим. технология. 2024. Т. 67. Вып. 2. С. 81-86. DOI: 10.6060/ivkkt.20246702.6899.
Литература
Belova N.V. Prospects for the use of biologically active compounds of higher basidiomycetes in Russia. Mikologiya Ftopatologiya. 2004. V. 38. N 2. Р. 1-7 (in Russian).
Novikov D.A., Kurchenko V.P., Azarko I.I. Photoprotective properties of melanins from grapes and tea. Radiats. Biologiya. Radioekologiya. 2001. V. 41. N 6. Р. 664-670 (in Russian).
Sushinskaya N.V., Kurchenko V.P. Melanins of tinder fungi. Tr. Belorus. Gos. Univ. 2006. V. 1. P. 143-154 (in Russian).
Babitskaya V.G., Shcherba V.V., Ikonnikova N.V. Melanin complex of the fungus Inonotus obliquus. Prikl. Biokhim. Mikrobiol. 2000. V. 36. N 4. P. 439-444 (in Russian). DOI: 10.1007/BF02738046.
Bisko N.A., Babitskaya V.G., Bukhalo A.S., Krupoderova T.A., Lomberg M.L., Mikhailova O.B., Puchkova T.A., Solomko E.F., Shcherba V.V. Biological features of medicinal macromycetes in culture: Collection of scientific papers in two volumes. V. 2. Kyiv: 2012. 459 p. (in Russian).
Lyakh S.P. Microbial melaninogenesis and its functions. M.: Nauka. 1981. 273 p. (in Russian).
Sushinskaya N.V., Kukulyanskaya T.A., Kurchenko V.P., Shostak L.M. Physico-chemical properties and obtaining melanins from basidiomycetes. Tr. BGTU. Ser. IV. Khimiya Tekhnol. Org. V-v. 2004. Iss. XII. P. 193–197 (in Russian).
Plonka P.M., Grabacka M. Melanin synthesis in microorganisms — biotechnological and medical aspects. Acta Biochim. Pol. 2006. V. 53. N 3. P. 429-443. DOI: 10.18388/ abp.2006_3314.
Pombeiro-Sponchiado S.R, Sousa G.S., Andrade J.C.R., Lisboa H.F., Gonçalves R.C.R. Production of melanin pigment by fungi and its biotechnological applications. In: Melanin. Ed. by M. Blumenberg. InTechOpen. 2017. P. 47-75. DOI: 10.5772/67375.
Puchkova T.A., Trukhonovets V.V., Ikonnikova N.V. The content of melanin pigments in the mycelium and fruiting bodies of the fungus Ganoderma lucidum (curt.: fr.) P. Karst depending on the method of cultivation. Mater. mezhdunar. nauch.-prakt. konf. Biotekhnologii mikroorganizmov. Minsk, November 27-29. 2019 (in Russian).
Tukhtaev K.R., Khamidov O.Z., Sultanova R.K., Chini-bekova N.K. Extract from chamomile flowers in bitter almond oil and obtaining stable emulsions based on it. Chem-ChemTech [Izv. Vyssh. Uchebn. Zaved. Khim. Khim. Tekhnol.]. 2021. V. 64. N 7. P. 61-67 (in Russian). DOI: 10.6060/ivkkt.20216407.6306.
Jarova O.G., Kurkin V.A., Petrukhina I.K. Organizational and economic analysis of angioprotective drugs. Mat. VIII-th Intern. Phytopharm congress "Actual problems of creating new drugs of natural origin". Michelli, Finland. 2005. P. 95-100 (in Russian).
Filatova A.V., Djurabaev D.T., Azimova L.B., Turaev A.S. Technology for the isolation of polysaccharides from the shells of horse chestnut (Aesculus hippocastanum L.) fruits and the study of its chemical composition. ChemChemTech [Izv. Vyssh. Uchebn. Zaved. Khim. Khim. Tekhnol.]. 2022. V. 65. N 7. P. 88-93 (in Russian). DOI: 10.6060/ivkkt.20226507.6605.
Masuko T., Minami A., Iwasaki N., Majima T., Nishimura S.I., Lee Y.C. Carbohydrate analysis by a phenol-sulfuric acid and method in microplate format. Analyt. Biochem. 2004. V. 339. N 1. P. 69-72. DOI: 10.1016/j.ab.2004.12.001.
Khalilova G.A., Turaev A.S., Mukhitdinov B.I., Filatova A.V., Khaytmetova S.B., Normakhamatov N.S. Isolation, physical and chemical characteristics of the polysaccharide isolated from the fruiting body of Inonotus hispidus. Khim. Rastit. Syr’ya. 2021. N 3. P. 99–106 (in Russian). DOI: 10.14258/jcprm.2021039028.
Orlov D.S. Soil humic acids and the general theory of humification. M.: Moskov. Gos. Univ. 1990. 325 p. (in Russian).
Butler M.J., Day J. Fungal melanins: a review. Can. J. Microbiol. 1998. V. 44. P. 1115-1136. DOI: 10.1139/w98-119.
Baraboy V.A. Melanin: structure, biosynthesis, biological functions. Ukr. Biokhim. Zhurn. 1999. V. 71. N 4. P. 5-12 (in Russian).
Arun G, Eyini M, Gunasekaran P. Characterization and biological activities of extracellular melanin produced by Schizophyllum commune (Fries). J. Exp. Biol. 2015. V. 53. Р. 380-387.
